FGFs与类器官
成纤维细胞生长因子（Fibroblast growth factor，FGF）广泛分布于细胞中，可调控细胞生长、增殖以及分化，并通过抑制BMP信号、提高Wnt信号的传导从而在类器官培养中发挥作用。
在类器官培养中最常见的成纤维细胞生长因子有FGF-2、FGF-4、FGF-7、FGF-10，在结构和生物活性上，FGF-10和FGF-7极为相似 ，都具有特异性促进有丝分裂的作用[1]。FGF-10来源于间充质细胞，可介导间充质-上皮间的信号转导，在胃、肺、肝等的器官生成中有着重要作用；另外，FGF-10在胚胎发育阶段扮演了至关重要的角色，特别是在原肠胚形成期间，它促进了I型上皮间充质转化（EMT）的过程，这一转化不仅是胚胎发育中的关键步骤，也被认为是癌细胞发生侵袭与转移（III型）过程中的一个核心机制[2]。因此，在一些肿瘤类器官的培养中常会添加FGF-10。
FGF-10与类器官培养
- 胃类器官
幽门螺旋杆菌感染是胃炎和胃癌的重要引发原因，而这类感染性疾病一直缺乏合适的研究模型。与肠道类器官相似，人类胃的成体干细胞也能够在体外培养并分化成胃类器官。2015年，Hans Clevers通过分离出人胃腺，通过加入胃发育的关键信号通路因子（EGF、R-spondin 1、Noggin、Wnt、FGF-10），成功构建人胃类器官，还通过显微注射技术，将细菌、病毒及寄生虫等病原体直接引入胃类器官的腔体中，实现了对感染过程的精准模拟。
人胃类器官生长形态[3]
- 瘤胃类器官
瘤胃是反刍动物特有的消化吸收代谢器官，瘤胃的正常发育对健康养殖和生产有着重要作用，但由于缺乏合适的研究模型，目前对调控瘤胃发育的作用机制仍不明确。2023年的一篇研究从单一瘤胃上皮细胞起始，成功培育出具有稳定功能的瘤胃上皮类器官，而且验证了这些类器官在经历传代、冻存及复苏后，仍能保持其原有功能，大大地减少了实验中对活体动物的需求，为探索瘤胃发育机制提供了更加伦理且高效的平台。
瘤胃类器官生长形态[4]
进一步地，研究深入探讨了培养基成分对类器官形成的影响。实验结果显示，当从培养基中去除表皮生长因子（EGF）、Noggin、Wnt3a、胰岛素样生长因子-1（IGF-1）及成纤维细胞生长因子-10（FGF-10）等关键生长因子时，类器官的形成率显著下降，表明这些因子对于类器官的诱导与维持至关重要。
减少不同生长因子的培养基中瘤胃类器官的形成率和直径[4]
FGF家族因子在类器官培养中使用广泛，其中，FGF-10多用于胃类器官、肝类器官、肺类器官、前列腺类器官、垂体瘤类器官、乳腺癌类器官的培养过程中。近岸蛋白提供高纯度、高活性、低内毒素的重组FGF-10蛋白，并已在多种类器官模型中验证其促进类器官生长的功能，让您的类器官培养更可控！
产品数据
- 高活性重组FGF-10蛋白（Cat#CR11）
Measured by its ability to induce FGFRIIIb receptor activity in HEK293T human embryonic kidney cells.The ED50 for this effect is 3.82ng/ml (Regularly tested).
The activity of Recombinant Human FGF-10 Protein(Cat#CR11) was comparable to Brand R.
- 类器官验证数据
Mouse Gastric organoids were cultured with EGF (Cat#C029), Wnt3a (Cat#C22R), Noggin (Cat#C028) , R-spondin 1 (Cat#CX83) and FGF-10 (Cat#CR11). The organoids showed good morphology.
Mouse bile duct organoids were cultured with EGF (Cat#C029) , R-spondin 1 (Cat#CX83) ,FGF-10 (Cat#CR11) and HGF (Cat#CJ72). The organoids showed good morphology.
Human breast cancer organoids were cultured with Wnt3a(Cat#C22R),Noggin (Cat#CB89),R-spondin 3 (Cat#C18C),KGF(Cat#CH73),FGF-10(Cat#CR11), EGF(Cat#C029)and NRG1-beta 1(Cat#C753). DAPI (blue), Ki67(red) and ER(green).
参考文献
[1]Emoto, H et al. “Structure and expression of human fibroblast growth factor-10.” The Journal of biological chemistry vol. 272,37 (1997): 23191-4.
[2]Abolhassani, Ali et al. “FGF10: Type III Epithelial Mesenchymal Transition and Invasion in Breast Cancer Cell Lines.” Journal of Cancer vol. 5,7 537-47. 21 Jun. 2014.
[3]Bartfeld, Sina, and Hans Clevers. “Organoids as Model for Infectious Diseases: Culture of Human and Murine Stomach Organoids and Microinjection of Helicobacter Pylori.” Journal of visualized experiments : JoVE ,105 53359. 12 Nov. 2015
[4]Xu Z, Xu X, Yang B, Mi Y, Wang J. 3D sheep rumen epithelial structures driven from single cells in vitro. Vet Res. 2023 Nov 9;54(1):104.