羊源性成分核酸检测试剂盒（PCR-荧光探针法）

羊源性成分核酸检测试剂盒（一管式 PCR-荧光探针法）

◆ 产品说明

物种鉴定系列可针对食品、饲料等样品中动物源性成分的特异核酸片段进行扩增，通过实时扩增曲线

判定结果。本产品用于羊源性成分的检测，检出限为 0.1%。

◆ 产品组成（48 测试）

试剂 含量

A-羊源-P 20μL × 8 管× 6 排

NG-P 100μL × 2 支

PG-羊源-P 100μL × 1 支

◆ 适用仪器

ABI 7500、CFX 96、Mx 3005P、LineGene9600 等实时荧光 PCR 仪。

◆ 自备耗材和仪器

①冰盒；②移液器（0.5-10μL，10-100μL，100-1000μL）及配套灭菌吸头；③离心机；④涡旋混匀器；⑤金属浴。

◆ 注意事项

1．本试剂检测灵敏度高。为了防止污染，实验要分区操作。

1）第一区：样本制备区。

2）第二区：模板添加区。

3）第三区：扩增及产物分析区。

★ 分区之间最好进行物理性隔离，避免人为因素造成的污染。

2．实验过程中穿戴工作服和乳胶手套，不同区域独立使用工具，需更换手套和实验服。

3．严格按照操作步骤操作，试剂配制和加样等步骤请严格按照说明书要求在冰盒上操作。

4．反应液中的成分对光敏感，应避光保存。试剂使用前要完全解冻，但应避免反复冻融，推荐使用前离心 30

秒，并按检测频次将反应液以适当体积分管保存。

5．反应结束后，扩增管请置于密封袋内丢弃，当日清理，开盖易造成气溶胶污染，禁止开盖。

6．不同批号试剂请勿混合使用，在有效期内使用。

◆ 样品处理

参照《SB/T 10923-2012 肉及肉制品中动物源性成分的测定 实时荧光 PCR 法》或其他标准处理样品，制备的

样本保存待用。

样品的采集和制备是动物源性鉴别的重要步骤，为防止交叉污染，应使用一次性消耗品，研钵应经 160℃干烤

2 h，其他不宜干烤或高压处理的器皿应使用 1%次**钠溶液浸泡。

取样应尽量采取肌肉组织，对于同一批样品，应多点采集合并后，作为一份样品进行均质，提取 DNA。

采样过程应快速完成，将采取的样品迅速放入组织搅碎机中进行均质成糜状，充分混匀，取 0.1 g 充分混匀的

样品，采用液氮研磨或均质器均质。

详细步骤请按照标准操作或查阅食安通软件。

◆ 实验操作

请于-20℃条件下保存，有效期 12 个月

SM-021032MⅡ-A02

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1.模板制备（样本制备区）

建议使用试剂配套动物基因组 DNA 提取系列产品，具体过程详见产品说明书。

2.添加模板（模板添加区，放置于冰盒上进行）

剪下所需测试数的已含有反应液的 PCR 管，放置在室温待解冻后，离心 30 秒后揭开封口膜，向每管反应液

中分别加入 5μL 模板，顺序为 NG、待测样品模板、PG-羊源-P。盖好配套的 PCR 管盖后，涡旋混匀 30s，离心 1min，

立即进行 PCR 扩增反应。

3.扩增反应（扩增及产物分析区）

使用荧光定量 PCR 仪，荧光基团选择 FAM，淬灭基团选择 TAMRA。

按下列条件设置扩增反应：

PCR 循环 荧光收集位点

95℃ 10 分钟 1 个循环 —

95℃ 15 秒

40 个循环

—

60℃ 1 分钟 ※

4.基线和阈值设定

基线调整取 3-15 个循环的荧光信号，阈值线应超过阴性对照扩增曲线的最高点

◆结果判定

检测样品无 Ct 值，曲线为直线或轻微斜线，无“S”型扩增曲线，可报告样品阴性，不含有羊源性成分或含量低

于检出限；

检测样品 Ct≤35，曲线呈“S”型扩增曲线，可直接报告样品阳性，含有羊源性成分；

检测样品 Ct＞35，可直接报告样品阴性，不含有羊源性成分或含量低于检测限。

★ NG 反应为平滑直线，PG 反应为“S”型扩增曲线，此次检测结果有效，否则无效。如重复检测结果仍为无效，请与技术支持

人员联系。